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SDS裂解液

SDS裂解液

產(chǎn)品編號:RL1060

產(chǎn)品規(guī)格:100ml

數(shù)量
價格 ¥200

SDS裂解液

● 產(chǎn)品包裝:

貨號

名稱

規(guī)格

RL1060

SDS裂解液

100 ml

● 產(chǎn)品簡介:

SDS裂解液(SDS Lysis Buffer)是一種比較強(qiáng)烈的細(xì)胞組織裂解液,其主要成分是Tris  (pH8.0), SDS,EDTA等。SDS裂解液裂解得到的蛋白樣品可以用于常規(guī)的WesternChIP(染色質(zhì)免疫共沉淀,chromatin immunoprecipitation)等。由于SDS裂解液有較強(qiáng)的裂解能力,IPCo-IP實(shí)驗(yàn)不建議使用該裂解液。由于含有較高濃度的SDS等干擾物質(zhì),不能用傳統(tǒng)Bradford法測定由本裂解液裂解得到樣品的蛋白濃度,可以使用BCA蛋白濃度測定試劑盒(貨號:RTP7102)或Bradford蛋白濃度測定試劑盒(去垢劑兼容型)(貨號:RTP7104)測定蛋白濃度。

● 貯存、效期及運(yùn)輸:

常溫保存;有效期2年;常溫運(yùn)輸。

● 注意事項(xiàng):

1. 需自備蛋白酶抑制劑如PMSF。

2. 如果使用本SDS裂解液用于ChIP實(shí)驗(yàn),在對超聲后基因組DNA大小進(jìn)行檢測時,如果采用瓊脂糖凝膠中添加花菁素類染料如GelRed或類似染料或使用含該類染料的DNA上樣緩沖液時,由于電泳時SDS會與此類染料結(jié)合形成異常條帶,條帶通常在600-1000 bp左右,因此會對超聲后基因組DNA大小的判斷造成一定的影響。建議采用后染方法即“電泳完畢后對瓊脂糖凝膠染色”的方式進(jìn)行條帶大小的檢測,使用該方法不會有異常條帶出現(xiàn),不影響對超聲后基因組DNA大小的判斷,而且條帶大小更準(zhǔn)確。

● 使用說明:

1.  準(zhǔn)備SDS裂解液:

取適當(dāng)量的裂解液,在使用前數(shù)分鐘內(nèi)加入1/100體積的100 mM PMSF(貨號:PM1790),使PMSF的最終濃度為1 mM或加入其他蛋白酶抑制劑。

注:SDS裂解液低溫會析出結(jié)晶,以下操作需保持常溫操作。

2. 細(xì)胞蛋白提?。?/b>

2.1 貼壁細(xì)胞:去除培養(yǎng)液,加入適量1×PBS,輕柔漂洗一遍,不要擾動貼壁細(xì)胞。按照6孔板每孔加入100-200 μl裂解液的比例加入裂解液,移液器吹打數(shù)下,使裂解液和細(xì)胞充分接觸,用細(xì)胞刮刀刮下細(xì)胞收集于1.5 ml離心管中。

培養(yǎng)板規(guī)格/培養(yǎng)皿表面積

細(xì)胞量

裂解液推薦使用量

100 mm培養(yǎng)皿

1.5×107

0.5-1 ml

60 mm培養(yǎng)皿

5×106

0.25-0.5 ml

35 mm培養(yǎng)皿

2×106

0.2-0.4 ml

6孔板

2.5×106

100-200 μl

24孔板

5×105

100-150 μl

96孔板

1×105

50-100 μl

2.2 懸浮細(xì)胞:450 g 4℃ 離心5 min收集細(xì)胞;用適量1×PBS重懸細(xì)胞,450 g 4℃ 離心5 min收集細(xì)胞;重復(fù)漂洗細(xì)胞一次;按照細(xì)胞沉淀體積(PCM)20 μl加入200 μl 裂解液的比例加入SDS裂解液,混勻細(xì)胞沉淀。

注:2×106 Jurkat細(xì)胞,其細(xì)胞沉淀體積(PCM,Packed Cell Volume)大約為20 μl。

2.3 裂解細(xì)胞:

2.3.1 裂解混合物超聲波處理(超聲條件根據(jù)儀器調(diào)整);如沒有超聲破碎儀,可以使用注射器用27G針頭處理裂解物10-15次(貨號:PE2719 ,蛋白提取針頭套裝),以徹底裂解細(xì)胞。

注:裂解中細(xì)胞會釋放出變性的核酸,呈團(tuán)狀粘稠透明樣,如不進(jìn)行超聲或針頭裂解處理,會導(dǎo)致裂解物非常粘稠,大大降低蛋白提取的得率和純度。

2.3.2 裂解物95℃處理10分鐘,間歇混勻。

2.4 離心收集上清:

充分裂解后,常溫16000 g離心10分鐘,取上清,即可進(jìn)行后續(xù)的PAGE、Western等操作。

3. 組織蛋白提?。?/b>

3.1 手術(shù)切除的組織塊迅速置于預(yù)冷的生理鹽水中,漂洗數(shù)次,洗凈組織血跡,用濾紙吸

干組織表面液體,將組織切成細(xì)小的碎片。

3.2 按照每20 mg組織加入200 μl裂解液的比例加入裂解液。(如果裂解不充分可以適當(dāng)添加更多的裂解液,如果需要高濃度的蛋白樣品,可以適當(dāng)減少裂解液的用量。)

3.3 用玻璃勻漿器勻漿5-10次,收集勻漿后的裂解混合物,超聲波處理(超聲條件根據(jù)儀器調(diào)整);如沒有超聲破碎儀,可以使用注射器用27G針頭處理裂解物10-15次(貨號:PE2719 ,蛋白提取針頭套裝),以徹底裂解細(xì)胞。

注:裂解中細(xì)胞會釋放出變性的核酸,呈團(tuán)狀粘稠透明樣,如不進(jìn)行超聲或針頭裂解處理,會導(dǎo)致裂解物非常粘稠,大大降低蛋白提取的得率和純度。

3.4 裂解物95℃處理10分鐘,間歇混勻。

3.5 常溫16000 g離心10分鐘,取上清,即可進(jìn)行后續(xù)的PAGE、Western等操作。


●  實(shí)驗(yàn)示例:

4-18% RealPAGE 預(yù)制膠

電泳條件:1×TGS 穩(wěn)壓200V 38-13mA 50min;染色:FastBlue蛋白染色液染色30min。

樣品1(LD直裂):2 ml K562細(xì)胞(6.5×106/ml),3000rpm 5min,沉淀用PBS清洗1次,離心后徹底去除PBS,加入130 μl超純水,100 μl5×loading buffer(變性,還原),95度10 min,上樣5 μl。

樣品2(4K-BME):1 ml 4K細(xì)菌細(xì)胞(O/N培養(yǎng)),13000  rpm 5min,離心后徹底去除殘余液體,加入130 μl超純水,100 μl 5×loading buffer,95度10min,上樣7.5 μl。

樣品3:1 ml K562細(xì)胞(5×106/ml),3000 rpm 5 min,沉淀用PBS清洗1次,離心后徹底去除PBS,加入500 μl SDS裂解緩沖液,超聲處理(10%功率,開5S,關(guān)10S,2min),冰浴10 min或95度10min,間歇混勻,13000 rpm低溫離心10 min,取上清即為總蛋白。加入5×loading buffer(變性,還原)調(diào)整樣品濃度為2 μg/μl,95度5min,上樣5,7.5和10 μl。





 
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